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Nature成果!規(guī)避CRISPR的“脫靶效應(yīng)”,關(guān)鍵在引導(dǎo)RNA

作者:悠然  來源:生物探索
  2018-09-17
作為最受關(guān)注的基因編輯神器,CRISPR技術(shù)的臨床價值一直有待落實(shí)。但是,這一顛覆性技術(shù)的“脫靶效應(yīng)”一直是阻礙其應(yīng)用的關(guān)鍵障礙之一。近日,科學(xué)家們找到了一種預(yù)測CRISPR準(zhǔn)確性的方法,能夠有效限制其錯誤編輯。

       CRISPR-Cas9基因編輯技術(shù)的有效運(yùn)行依賴于Cas9酶在特定目標(biāo)位點(diǎn)切割DNA。但是,這一技術(shù)卻面臨著“脫靶”的風(fēng)險,即Cas9酶可能會在錯誤的位置剪切。我們都知道,編輯了“預(yù)想之外”的基因,很有可能會帶來不可預(yù)控的嚴(yán)重后果。

       通常,我們檢測非靶標(biāo)突變(off-target mutations)的方法是:先利用計算機(jī)算法預(yù)測出最可能被“錯誤擊中”的區(qū)域,然后再檢查這些“危險區(qū)域”的缺失和插入情況。

       9月12日,《Nature》期刊最新發(fā)表一篇題為“In vivo CRISPR editing with no detectable genome-wide off-target mutations”的研究,揭示了一種預(yù)測基因組編輯中“錯誤突變”的新策略,并在小鼠試驗(yàn)中證實(shí)精心設(shè)計的引導(dǎo)RNA鏈不會產(chǎn)生任何可檢測到的錯誤突變。

       “脫靶效應(yīng)”有多嚴(yán)重

       非靶向剪切可能發(fā)生在對生物功能沒有影響的基因組位置,也可能會破壞細(xì)胞的基本功能。通常,研究人員會利用計算機(jī)程序進(jìn)行預(yù)測,但是這些預(yù)測依賴于引導(dǎo)RNA如何與DNA結(jié)合以及Cas9如何切割的假設(shè)。

       2017年5月,《Nature Methods》期刊曾發(fā)表一篇文章,揭示CRISPR能夠引入數(shù)百種意想不到的突變。他們發(fā)現(xiàn),CRISPR確實(shí)能夠成功糾正引發(fā)失明的基因,但兩只接受了基因治療的小鼠的基因組中存在超過1500個單核苷酸突變以及超過100處更大片段的缺失和插入。需要強(qiáng)調(diào)的是,這些DNA突變都沒有被計算機(jī)算法預(yù)測出來。

       雖然錯誤概率遠(yuǎn)超我們的認(rèn)知,但是我們依然缺乏一種能夠準(zhǔn)確預(yù)測CRISPR非靶標(biāo)編輯的方法,這意味著,目前我們還不清楚這些預(yù)測突變是否會發(fā)生以及發(fā)生的頻率如何。

       最新研究:引導(dǎo)RNA 是關(guān)鍵

       文章作者、瑞典阿斯利康公司的生物學(xué)家Marcello Maresca表示,公司的一個長期目標(biāo)是能夠使用基因編輯技術(shù)治療一些人類疾病。“然而,要想實(shí)現(xiàn)CRISPR藥物的潛力,就需要開發(fā)出一種方法,能夠讓目標(biāo)基因得到有效修飾,且基因組其他位置不受影響。”

       在這項新研究中,Maresca團(tuán)隊與哈佛大學(xué)和麻省總醫(yī)院的生物學(xué)家、病理學(xué)家J. Keith Joung課題組合作,開發(fā)了一種“體內(nèi)非靶點(diǎn)驗(yàn)證”的方法(verification of in vivo off-targets,VIVO),可以穩(wěn)定地鑒定出CRISPR在體內(nèi)全基因組中的脫靶效應(yīng)。

       首先,他們以小鼠基因組為研究對象,在體外將其DNA剪切成片段,每個片段約包含300個堿基對,然后連接一系列使DNA形成閉環(huán)的“接口”(adapters)。隨后,他們引入一個Cas9核酸酶和引導(dǎo)RNA復(fù)合體,它們會在環(huán)狀DNA的一些位點(diǎn)上進(jìn)行切割,使其線性化。最后,研究人員會添加另一批核酸酶,負(fù)責(zé)降解剩余未被剪切的閉環(huán)DNA。

       通過這一系列步驟,研究人員可以對線性化的DNA進(jìn)行測序,以檢測Cas9在哪些位置進(jìn)行了切割(無論是有意的還是無意的),同時預(yù)測引導(dǎo)RNA是否會在體內(nèi)引發(fā)脫靶效應(yīng)。

       以上體外驗(yàn)證工作是J. Keith Joung團(tuán)隊于2017年完成的工作(發(fā)表在《Nature Methods》期刊)。現(xiàn)在,他們將成果轉(zhuǎn)移至體內(nèi):利用一引導(dǎo)RNA(在體外預(yù)測中,發(fā)現(xiàn)其會在基因組中造成數(shù)千個錯誤剪切位點(diǎn))進(jìn)行小鼠體內(nèi)試驗(yàn)。結(jié)果顯示,超40%的預(yù)測位點(diǎn)在小鼠肝 臟中確實(shí)發(fā)生了突變。

       而且,在體外預(yù)測中,一個位點(diǎn)出現(xiàn)的頻率越高,它在體內(nèi)發(fā)生突變的可能性就越大。換句話說,引導(dǎo)RNA在體外是“粗心”的,在體內(nèi)肯定也是粗心的。

       研究團(tuán)隊還檢測了小鼠體內(nèi)試驗(yàn)中基因組上的特殊位點(diǎn)——這些點(diǎn)在計算機(jī)預(yù)測中都屬于可能的脫靶位點(diǎn),但是在體外試驗(yàn)中并沒有出現(xiàn)——結(jié)果發(fā)現(xiàn),在體內(nèi)試驗(yàn)中這些位點(diǎn)并沒有出現(xiàn)突變。這意味著,體外試驗(yàn)并沒有錯過真正的非目標(biāo)剪切。

       更重要的是,他們證實(shí),設(shè)計對靶點(diǎn)高度特異性的引導(dǎo)RNA,可以有效指導(dǎo)小鼠肝 臟細(xì)胞的基因編輯,且不會出現(xiàn)可檢測到的非靶向突變。

       這項研究證實(shí)“你確保有一個真正準(zhǔn)確的引導(dǎo)RNA”,多倫多大學(xué)的發(fā)育生物學(xué)家Janet Rossant表示,“這項研究的突破性在于,VIVO能夠檢測出細(xì)胞特定的非靶標(biāo)突變,而不是依賴于參考基因組序列(不一定能夠反映你所研究的有機(jī)體的遺傳背景,或者在臨床應(yīng)用中患者的遺傳背景)。由于可以針對來自于患者或者特定有機(jī)體的基因組DNA在體外進(jìn)行篩選,因此測序步驟的讀取結(jié)果反映了受試者基因組中可能的Cas9目標(biāo)。”

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